Validación de un método analítico de separación y cuantificación de Ácido Shikímico presente en el fruto Cotoneaster Pannosus (Holly liso) recolectado en Bogotá, Colombia mediante Cromatografía Líquida de Alta Resolución (CLAR)
dc.contributor.advisor | León Ávila, Emerson Eliecer | |
dc.contributor.author | Sánchez Camacho, Danna Sofía | |
dc.contributor.author | Güiza Luna , María José | |
dc.date.accessioned | 2024-05-16T22:28:37Z | |
dc.date.available | 2024-05-16T22:28:37Z | |
dc.date.issued | 2024-05 | |
dc.description.abstract | El Ácido Shikímico (AS) es un precursor en la síntesis del fármaco Oseltamivir, utilizado para tratar y prevenir la influenza [1]. Actualmente, se extrae del anís estrellado chino (Illicium verum), un método de producción ineficiente y complejo [2], lo que impulsa la búsqueda de alternativas que satisfagan las demandas del mercado. En este sentido, el fruto del arbusto Cotoneaster pannosus ha surgido como una opción prometedora debido a su alto contenido de polifenoles, especialmente de AS [3]. Considerando la importancia de este compuesto en la industria farmacéutica y su limitada fuente de obtención, se validó un método de separación y cuantificación de AS en el fruto del Cotoneaster Pannosus mediante CLAR, cuyas condiciones cromatográficas óptimas fueron: columna ReproSil-PureBasic-C8, temperatura de 20°C, fase móvil de HCOOH 1,0% en agua y acetonitrilo, flujo de 0,4mL/min en gradiente, volumen de inyección de 5μL y detección UV a 230nm. El método validado demostró ser lineal (R2:0,998), exacto (100,1%±3,6%), preciso (CV<3%) y selectivo (α>1), confirmando su idoneidad para la cuantificación del AS en el fruto, en donde se encontró una concentración de 48,1ppm; lo que sugiere el potencial del fruto como fuente prometedora de dicho compuesto. | |
dc.description.abstractenglish | Shikimic acid (SA) is a precursor in the synthesis of the drug Oseltamivir, used to treat and prevent influenza [1]. Currently, it is extracted from Chinese star anise (Illicium verum), an inefficient and complex production method [2], which drives the search for alternatives that meet market demands. In this sense, the fruit of the Cotoneaster pannosus shrub has emerged as a promising option due to its high content of polyphenols, especially SA [3]. Considering the importance of this compound in the pharmaceutical industry and its limited source of obtaining, a method for separation and quantification of AS in the fruit of Cotoneaster pannosus by HPLC was validated, whose optimal chromatographic conditions were: ReproSil-PureBasic-C8 column, temperature of 20°C, mobile phase of HCOOH 1.0% in water and acetonitrile, flow rate of 0.4mL/min in gradient, injection volume of 5μL and UV detection at 230nm. The validated method proved to be linear (R2:0.998), accurate (100.1%±3.6%), precise (CV<3%) and selective (α>1), confirming its suitability for the quantification of SA in fruit, where a concentration of 48.1ppm was found; suggesting the fruit's potential as a promising source of this compound. | |
dc.description.degreelevel | Pregrado | spa |
dc.description.degreelevel | Químico Farmacéutico | spa |
dc.format.mimetype | application/pdf | |
dc.identifier.instname | Universidad El Bosque | spa |
dc.identifier.reponame | reponame:Repositorio Institucional Universidad El Bosque | spa |
dc.identifier.repourl | repourl:https://repositorio.unbosque.edu.co | |
dc.identifier.uri | https://hdl.handle.net/20.500.12495/12139 | |
dc.language.iso | es | |
dc.publisher.faculty | Facultad de Ciencias | spa |
dc.publisher.grantor | Universidad El Bosque | spa |
dc.publisher.program | Química Farmacéutica | spa |
dc.relation.references | 1. R. K. Saxena, P. Tripathi, and G. Rawat, “Pandemism of swine flu and its prospective drug therapy,” Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., vol. 31, no. 12, pp. 3265–3279, 2012, doi: 10.1007/s10096-012-1716-5. | |
dc.relation.references | 2. J. C. Borah, “Shikimic acid: A highly prospective molecule in pharmaceutical industry,” Curr. Sci., vol. 109, no. 9, pp. 1672–1679, 2015, doi: 10.18520/v109/i9/1672-1679. | |
dc.relation.references | 3. F. Les et al., “Chemical constituents, radical scavenging activity and enzyme inhibitory capacity of fruits from Cotoneaster pannosus Franch.”, Food Funct., vol. 8, núm. 5, pp. 1775–1784, may 2017, doi: 10.1039/C7FO00330G. | |
dc.relation.references | 4. M. Javanian, M. Barary, S. Ghebrehewet, V. Koppolu, V. K. R. Vasigala, y S. Ebrahimpour, “A brief review of influenza virus infection”, J. Med. Virol., vol. 93, núm. 8, pp. 4638–4646, ago. 2021, doi: 10.1002/JMV.26990. | |
dc.relation.references | 5. International Council for Harmonisation. Step, “Committee for Medicinal Products for Human Use ICH Q2(R2) Guideline on validation of analytical procedures”, 2023. Disponible en: www.ema.europa.eu/contact. | |
dc.relation.references | 6. Shimadzu Scientific Instruments, “High Performance Liquid Chromatography (HPLC) Basics”, 2024. https://www.ssi.shimadzu.com/service-support/faq/liquid-chromatography/knowledge-base/hplc-basics/index.html. | |
dc.relation.references | 7. D. B. Rorabacher, “Statistical Treatment for Rejection of Deviant Values: Critical Values of Dixon’s ‘Q’ Parameter and Related Subrange Ratios at the 95% Confidence Level,” Anal. Chem., vol. 63, no. 2, pp. 139–146, 1991, doi: 10.1021/ac00002a010. | |
dc.relation.references | 8. “Table Critical values for the Cochran test for variance outliers Degree of fredom = n 1 . Level of significance = 0 . 01 Kanji , Gopal K . 100 Statistical Tests . London : SAGE Publication Ltd ., 1993 .,” pp. 1–2, 2000. | |
dc.relation.references | 9. Skoog Douglas A, Holler F. James, Crouch Stanley R. Principios de análisis instrumental; Sexta Edición; Cengage Learning Editores ; 2008; México, 6a ed. 2007. | |
dc.relation.references | 10. D. C. Harris y V. Berenguer Navarro, Análisis químico cuantitativo. Reverté, 2003. | |
dc.relation.references | 11. S. Ahuja and M. W. Dong, Handbook of Pharmaceutical Analysis by HPLC, vol. 6, Elsevier, 2005. | |
dc.relation.references | 12. K. Rajbhar, H. Dawda, and U. Mukundan, “Polyphenols: Methods of Extraction,” Sci. Revs. Chem. Commun, vol. 5, no. 1, pp. 1–6, 2015, [Online]. Available: www.sadgurupublications.com. | |
dc.relation.references | 13. National Library of Medicine, “Shikimic acid | C7H10O5 | CID 8742 - PubChem”. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/Shikimic-acid. | |
dc.relation.references | 14. M. Cai, Y. Luo, J. Chen, H. Liang, and P. Sun, “Optimization and comparison of ultrasound-assisted extraction and microwave-assisted extraction of shikimic acid from Chinese star anise,” Sep. Purif. Technol., vol. 133, pp. 375–379, 2014, doi: 10.1016/j.seppur.2014.06.064. | |
dc.relation.references | 15. Trapalis CC, Keivanidis P, and Kordas G, “Raymond E Kirk_ Donald F Othmer_ Martin Grayson_ David Eckroth_ et al-Kirk-Othmer Encyclopedia of Chemical Technology Vol 5 -Wiley (2004),” vol. 5. pp. 186–190, 2003. | |
dc.relation.references | 16. Kenneth A. Rubinson, Análisis instrumental . 2000. ALHAMBRA; 1er edición. | |
dc.relation.references | 17. F. Quattrocchi, O.; Abelaira, S.; Laba, Introducción a la HPLC. 1992. | |
dc.relation.references | 18. D. Ahumada, C. Paredes, J. Abella, and I. González, Validación De Métodos En Análisis Químico Cuantitativo, vol. 1. 2023. | |
dc.relation.references | 19. P. K. Sahu, N. R. Ramisetti, T. Cecchi, S. Swain, C. S. Patro, y J. Panda, “An overview of experimental designs in HPLC method development and validation”, J. Pharm. Biomed. Anal., vol. 147, pp. 590–611, ene. 2018, doi: 10.1016/J.JPBA.2017.05.006. | |
dc.relation.references | 20. M. Veer Sujata Umakant y R. Darwin, “QbD Approach to Analytical RP- HPLC Method Development and Validation of Erlotinib in Pharmaceutical Dosage Form”, Tuijin Jishu/Journal Propuls. Technol., vol. 44, núm. 5, pp. 5012–5020. | |
dc.relation.references | 21. Z. Raheem, “Handbook of instrumental techniques for analytical chemistry,” Choice Rev. Online, vol. 35, no. 06, pp. 35-3308-35–3308, 1998, doi: 10.5860/choice.35-3308. | |
dc.relation.references | 22. A. M. Sabir, M. Moloy, and P. S. Bhasin, “Hplc Method Development and Validation: a Review,” Int. Res. J. Pharm., vol. 4, no. 4, pp. 39–46, 2016, doi: 10.7897/2230-8407.04407. | |
dc.relation.references | 23. S. Dagron, “Die International Conference on Harmonization of Technical Requirements for Registration of Pharmaceuticals for Human Use (ICH),” Handb. Ethik und R. der Forsch. am Menschen, pp. 541–545, 2014, doi: 10.1007/978-3-642-35099-3_86. | |
dc.relation.references | 24. J. J. Torralvo, "Validación de un método químico analítico de HPLC en R, 2017. | |
dc.relation.references | 25. G. F. Reed, F. Lynn, y B. D. Meade, “Use of coefficient of variation in assessing variability of quantitative assays”, Clin. Diagn. Lab. Immunol., vol. 9, núm. 6, pp. 1235–1239, nov. 2002, doi: 10.1128/CDLI.9.6.1235-1239.2002/ASSET/A0C29535-4BDB-4677-BF63-F42E65B10E39/ASSETS/GRAPHIC/CD0620069001.JPEG. | |
dc.relation.references | 26. K. L. Barnett, B. Harrington, and T. W. Graul, “Validation of liquid chromatographic methods,” Liq. Chromatogr. Fundam. Instrum. Vol. 1, Third Ed., vol. 1, no. November, pp. 821–843, 2023, doi: 10.1016/B978-0-323-99968-7.00035-7. | |
dc.relation.references | 27. The United States Pharmacopeial Convention. "United States Pharmacopoeia", USP-NF Farmacopea Americana. USP 43-NF 38, 2020. | |
dc.relation.references | 28. D. Carvalho, . Jesus, C. Pinho, R. F. Oliveira, F. Moreira, and A. I. Oliveira, “Validation of an HPLC-DAD Method for Quercetin Quantification in Nanoparticles,” Pharmaceuticals, vol. 16, no. 12, pp. 1–14, 2023, doi: 10.3390/ph16121736. | |
dc.relation.references | 29. F. Sánchez-hoyos, A. Cárdenas, J. Mercado-camargo, and G. Domínguez-, “Validación de una metodología analítica USP por HPLC para la cuantificación de warfarina sódica en tabletas Resumen Validation of an analytical HPLC method for the quantification Introducción,” vol. 45, no. 3, pp. 470–483, 2016. | |
dc.relation.references | 30. R. Chin and B. Y. Lee, “Introduction to Clinical Trial Statistics,” Princ. Pract. Clin. Trial Med., pp. 43–60, 2008, doi: 10.1016/b978-0-12-373695-6.00003-x. | |
dc.relation.references | 31. A. E. O’Keeffe, “Mass spectrometry and gas chromatography [3],” Chem. Eng. News, vol. 43, no. 33, p. 4, 1965, doi: 10.5702/massspec1953.1959.3. | |
dc.relation.references | 32. M. A. Munar Velandia, D. S. Nieto Lara, and M. F. F. Padilla, “Análisis comparativo del contenido de ácido rosmarínico en muestras de semillas de hinojo ( Foeniculum vulgare ) procedentes de Colombia y España por medio de cromatografía líquida de alta eficiencia ( HPLC ). Análisis comparativo del contenido de ácido r,” pp. 1–62, 2023. | |
dc.relation.references | 33.E. Eliecer, L. Ávila, F. De Ciencias, P. De, and U. El Bosque, “Desarrollo de un método de cromatografía líquida de alta eficiencia ( HPLC ) para la separación y cuantificación de diosgenina en un extracto del fruto iguaraya de la planta cardón guajiro ( Stenocereus griseus ),” Av. en Química, vol. 18, no. 2, pp. 55–59, 2023. | |
dc.rights | Attribution-NoDerivatives 4.0 Internacional | en |
dc.rights.accessrights | info:eu-repo/semantics/openAccess | |
dc.rights.accessrights | http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 | |
dc.rights.local | Acceso abierto | spa |
dc.rights.uri | http://creativecommons.org/licenses/by-nd/4.0/ | |
dc.subject | Ácido shikímico | |
dc.subject | Validación | |
dc.subject | Holly liso (Cotoneaster pannosus) | |
dc.subject | Cuantificación | |
dc.subject | Cromatografīa líquida de alta resolución (CLAR). | |
dc.subject.ddc | 615.19 | |
dc.subject.keywords | Shikimic acid | |
dc.subject.keywords | Validation | |
dc.subject.keywords | Holly liso (Cotoneaster pannosus) | |
dc.subject.keywords | Quantification | |
dc.subject.keywords | High performance liquid chromatography (HPLC). | |
dc.title | Validación de un método analítico de separación y cuantificación de Ácido Shikímico presente en el fruto Cotoneaster Pannosus (Holly liso) recolectado en Bogotá, Colombia mediante Cromatografía Líquida de Alta Resolución (CLAR) | |
dc.title.translated | Validation of an analytical method for the separation and quantification of Shikimic Acid present in Cotoneaster Pannosus (Holly liso) fruit collected in Bogotá, Colombia by High Performance Liquid Chromatography (HPLC) | |
dc.type.coar | https://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f | |
dc.type.coarversion | https://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aa | |
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dc.type.local | Tesis/Trabajo de grado - Monografía - Pregrado |
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